Методические указания мук 3 721-98 3 Пищевые продукты и пищевые добавки. Определение безопасности и эффективности биологически активных добавок к пище"



страница7/8
Дата22.04.2016
Размер1.29 Mb.
1   2   3   4   5   6   7   8

Приложение N 6

к разделу "Нутрицевтики"
Оценка эффективности биологически активных добавок к пище,

содержащих железо
Экспериментальные исследования на крысах
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Количество|Количество крыс|Эксперименталь-|Продолжите- |Исходная масса|

|групп крыс|в группе |ные группы |льность опыта|крыс, г |

|——————————|———————————————|———————————————|—————————————|——————————————|

| 3 | 8 - 10 | контроль | 2 - 3 месяца| 30 - 50 |

| | | опыт-1 | | |

| | | опыт-2 | | |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Описание групп крыс:

- контроль - контрольная группа крыс находится на обычном полусинтетическом рационе;

- опыт-1 и опыт-2 - у этих групп животных создается модель алиментарной железодефицитной анемии. Для этого крысы этих групп рассаживаются в специальные клетки (пластмассовые клетки без каких-либо железосодержащих составляющих с прорезями внизу, что исключает копрофагию у крыс) и получают корм, из которого полностью исключено железо (при необходимости отдельные компоненты полусинтетического рациона максимально отмывают от железа). Состав экспериментального рациона: казеин - 22%, подсолнечное масло (рафинированное - 10%, кукурузный крахмал - 60,7%, целлюлоза - 3%, солевая смесь - 0,1% (без добавления железа), витаминная смесь - 0,1%, холинхлорид - 0,2%. С подсолнечным маслом в корм вносится ретинолпальмитат и витамин Д. Весь рацион готовится на деионизированной воде, эту же воду в ходе эксперимента используют в качестве питьевой воды. Скорость и глубина развития железодефицитной анемии контролируют, определяя концентрацию гемоглобина в периферической крови. При снижении концентрации гемоглобина ниже 90 г/л считается, что у животных имеется железодефицитная анемия. Для ее подтверждения часть животных из группы опыт-1 забивают и определяют: концентрацию гемоглобина в периферической крови, концентрацию железа в сыворотке крови, общую железосвязывающую способность сыворотки крови и рассчитывают коэффициент насыщения трансферрина, содержание железа в сыворотке в печени крыс, количество эритроцитов в периферической крови, мазок крови на наличие анизо- и пойкилоцитоза. При подтверждении железодефицитной анемии животным группы опыт-2 в корм вносят исследуемую биологически активную добавку к пище (с соответствующим расчетом на содержание железа). Восстановление статуса железа в организме крыс в дальнейшем ходе эксперимента оценивают по концентрации гемоглобина в крови. При восстановлении концентрации гемоглобина в крови до величин, имеющих место у контрольной группы животных, экспериментальных животных забивают и определяют гематологические и биохимические показатели, характеризующие состояние обмена железа в организме. Важно определить содержание железа в печени, т. к. этот показатель характеризует запасы железа в организме.

Приложение N 7

к разделу "Нутрицевтики"
Биологические активные добавки к пище,

способствующие выведению из организма чужеродных и

токсичных веществ, продуктов обмена веществ
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Показатель |Метод |Литературный |

| | |источник |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение содержания ци-|Спектрофотометрический | (46) |

|тохрома Р-450 в органах | | |

|экспериментальных животных| | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение активности |Спектрофотометрический | (47) |

|о-демитилирования амидопи-| | |

|рина | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение активности |Спектрофотометрический | (48) |

|о-демитилирования р-нитро-| | |

|анизола | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение гидроксилиро- |Спектрофлюориметрический | (49) |

|вания 3,4 бензпирена | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение о-деэтилирова-|Спектрофлюориметрический | (50) |

|ния 7-этоксикумарина | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение о-диэтилирова-|Спектрофлюориметрический | (51) |

|ния 7-этоксирезофурина | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение активности ли-|Спектрофотометрический, | (52) |

|зосомальных ферментов: |спектрофлюориметрический | |

|арилсульфатазы А и В, бе- | | |

|та-галактозидаза, бета- | | |

|глюкуронидаза, альфа-ман- | | |

|низодаза, бета-N-ацетил- | | |

|глюкозаминидаза в сыворот-| | |

|ке крови и органах лабора-| | |

|торных животных | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение активности |Спектрофлюориметрический | (53) |

|эпоксидгидролазы в субкле-| | |

|точных фракциях печени и | | |

|слизистой тонкой кишки | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение активности УДР|Спектрофотометрический и | (54) |

|-глюкуронозилтрансферазы |спектрофлюориметрический | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Определение активности |Спектрофотометрический | (55) |

|карбоксилэстеразы в субк- | | |

|леточных фракциях и слизи-| | |

|стой тонкой кишки | | |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————



Приложения к разделу "Парафармацевтики"
Приложение N 1. Оценка эффективности биологически активных добавок к

пище, применяемых в качестве ингибиторов образования

N-нитрозаминов

Приложение N 2. Оценка влияния биологически активных добавок к пище,

предлагаемых в качестве защитных средств от

ионизирующего излучения

Приложение N 3. Оценка эффективности БАД к пище, рекомендуемых для

профилактики и вспомогательной терапии при

заболеваниях печени

Приложение N 4. Оценка эффективности БАД к пище, рекомендуемых для

профилактики и в качестве вспомогательных средств

при лечении сердечно-сосудистых заболеваний
Приложение N 1

к разделу "Парафармацевтики"
Оценка эффективности биологически активных добавок

к пище, применяемых в качестве ингибиторов

образования N-нитрозаминов
Известно, что наличие в пищевых продуктах азотсодержащих соединений (аминов, амидов, алкилмочевин и др.), а также нитратов и нитритов может приводить к образованию канцерогенных N-нитрозаминов как в пищевом продукте, так и в организме, причем компоненты, входящие в состав пищевого продукта, могут усиливать, замедлять или полностью ингибировать этот процесс. БАД к пище, являющиеся в основном высокоактивными соединениями, могут играть важную роль как в экзогенном, так и в эндогенном образовании канцерогенных N-нитрозаминов. В связи с этим оценка эффективности применяемых БАД к пище как ингибиторов образования канцерогенных N-нитрозаминов имеет важное значение.
Оценка эффективности ингибирования нитрозирования

в условиях IN VITRO
В среду, состоящую из 5 мл натурального желудочного сока рН 0,8 - 1,0, 0,5 мл водного раствора нитрита натрия (концентрация 30 мг/мл) и 0,5 мл диэтиламина (концентрация 46,7 мг/мл), вносят 1 мл раствора БАД к пище (БАД к пище растворяется в соответствующем растворителе, концентрация БАД выбирается в зависимости от рекомендуемой дозировки), энергично перемешивают до полного растворения, доводят рН раствора до 4,5 добавлением 0,1 н раствора соляной кислоты или 0,1 н раствора гидроокиси натрия. Контрольный опыт проводят аналогично, но вместо раствора БАД к смеси желудочного сока и предшественников нитрозаминов добавляется 1 мл соответствующего растворителя. Смеси (опыт и контроль) термостатируются при 37° С в течение 30 мин. Реакцию останавливают добавлением 0,1 н раствора гидроокиси натрия (рН 8-9). Образовавшиеся нитрозамины извлекают из смеси экстракцией свежеперегнанным метиленхлоридом.

Объединенные экстракты высушивают прокаленным сульфатом магния, концентрируют и проводят идентификацию и количественное определение нитрозаминов хемилюминисцентным методом (80) и (41).


Оценка эффективности ингибирования нитрозирования

в условиях IN VIVO
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Вид животных |Количество |Исходная |Количество живот-|Название |

| |групп |масса живот-|ных в группе |групп |

| |животных |ных, г | |животных |

|—————————————————|———————————|————————————|—————————————————|——————————|

|крысы, самцы | 2 | 100 - 150 | 10 |контроль |

| | | | |опыт |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Крысы обеих групп (контроль и опыт) находятся на полусинтетическом рационе. Каждому животному контрольной и опытной группы натощак вводят желудочным зондом последовательно по 1 мл водных растворов нитрита натрия (в пересчете на нитрит ион) и диэтиламина в дозах соответственно 15 и 24 мг/кг массы крысы. Животным опытной группы помимо предшественников вводят 1 мл БАД к пище. Животным контрольной группы 1 мл соответствующего растворителя, используемого для растворения БАД к пище. Ровно через 30 мин после введения растворов всех животных забивают, отделяют желудок вместе с содержимым, помещают в жидкий азот. Анализ N-нитрозаминов осуществляют хемилюминисцентным методом (81) и (41).
Нитрозопролиновый тест
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Вид животных |Количество |Исходная |Количество живот-|Название |

| |групп |масса живот-|ных в группе |групп |

| |животных |ных, г | |животных |

|—————————————————|———————————|————————————|—————————————————|——————————|

|крысы, самцы | 2 | 100-150 | 10 |контроль |

| | | | |опыт |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Крысы обеих групп находятся на полусинтетическом рационе.

Контроль - крысам натощак вводят 1 мл водных растворов нитрита натрия и пролина в дозах соответственно 15 и 50 мг/кг массы тела животного. Опыт - крысам помимо нитрита натрия и пролина вводят натощак 1 мл раствора БАД к пище. Крыс обеих групп помещают в обменные клетки на сутки для сбора мочи, предварительно в сосуды для сбора мочи вносят 1 мл 30%-ного раствора гидроксида натрия. Собранную мочу замораживают до минус 18° С и хранят до проведения анализа на содержание нитрозопролина (не более 10 дней). Содержание нитрозопролина определяют по (79).


Приложение N 2

к разделу "Парафармацевтики"
Оценка влияния биологически активных добавок к пище,

предлагаемых в качестве защитных средств

от ионизирующего излучения
Экспериментальные исследования на крысах
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Количество групп|Количество живо-|Экспериментальные |Продолжительность |

|животных |тных в группе | группы | опыта |

|————————————————|————————————————|——————————————————|——————————————————|

| 2 | 10 | контроль | 30 дней |

| | | опыт | |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Модель воздействия ионизирующего излучения.

Крысы контрольной и опытной групп получают однократное общее гамма-облучение в дозе 8 Гр на установке "Хизотрон" с источником Со (Е - 1,25 МэВ) с расстояния 0,7 м.

После облучения контрольная группа крыс находится на общевиварном рационе. Крысы опытной группы получают исследуемую БАД к пище вместе с кормом.

Ежедневно регистрируется гибель животных, взвешивание производится каждые трое суток.
Характеристика проницаемости кишечного барьера

(экспериментальные исследования на крысах)
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Количество групп|Количество живо-|Экспериментальные |Продолжительность |

|животных |тных в группе | группы | опыта |

|————————————————|————————————————|——————————————————|——————————————————|

| 2 | 10 | контроль | 15 - 18 дней |

| | | опыт | |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Модель воздействия ионизирующего излучения.

Крысы контрольной и опытной групп получают однократное общее гамма-облучение в дозе 4 Гр на установке "Хизотрон" с источником Со (Е - 1,25 МэВ) с расстояния 0,7 м.

Данная доза не вызывает гибели животных в ранний период и характеризуется обратимыми изменениями в морфофункциональном состоянии эпителиального барьера тонкой кишки. Животные опытной группы на протяжении 10 - 14 дней перед облучением и в течение 2 суток после облучения получают с кормом исследуемую БАД к пище. Животные контрольной группы на протяжении всего эксперимента получают общевиварный рацион.

Через сутки после облучения животным опытной и контрольной групп вводят внутрижелудочно по 500 мг ПЭГ-4000 (Serva, Германия) и собирают мочу в течение последующих 18 ч в обменных клетках. По окончании сбора мочи крысам внутрижелудочно вводят по 500 мг куриного овальбумина (пятикратно перекристаллизованного) и через 3 ч обескровливают под глубокой эфирной анестезией. Препарат слизистой оболочки тощей кишки подвергают морфометрическому исследованию на светооптическом уровне.

Из аликвоты мочи экстрагируют ПЭГ-4000 путем экстракции 10-кратным объемом перегнанного хлороформа. Хлороформ отгоняют и сухой остаток анализируют методом гель-проникающей хроматографии с рефрактометрическим детектированием в системе метанол-вода 1:1 (88). Содержание ПЭГ-4000 в пробах определяют по стандартному графику. Параллельно в другой аликвоте мочи анализируют содержание креатинина с помощью колориметрической реакции ЯФФЕ (89). Проницаемость кишечного барьера для ПЭГ-4000 характеризуют величиной экскреции ПЭГ-4000 с мочой в процентах от введенной дозы в расчете на 11 ммоль экскретируемого креатинина. В сыворотке крови анализируют содержание антигенных структур куриного овальбумина с помощью двухвалентного твердофазного иммуноферментного метода (sandwich-ELISA), рекомендуемого как официальный метод ВОЗ (90).

Проницаемость кишечного барьера для нерасщепленного белка характеризуется величиной его всасывания в кровь в процентах от внутрижелудочно введенной дозы.
Приложение N 3

к разделу "Парафармацевтики"
Оценка эффективности БАД к пище, рекомендуемых

для профилактики и вспомогательной терапии

при заболеваниях печени
Экспериментальные исследования на крысах с использованием

модели подострого токсического гепатита
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Количество |Количество |Контроль |Опыт-1 |Опыт-2 |

|групп крыс |крыс в группе | | | |

|———————————|——————————————|————————————|———————————————|———————————————|

| 3 | 16 |общевиварный|модель гепатита|модель гепатита|

| | |рацион | |на фоне введе- |

| | | | |ния изучаемой |

| | | | |БАД |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Модели подострого гепатита:

- крысам вводится подкожно четыреххлористый углерод в дозе 2 мл/кг массы крысы в смеси с подсолнечным маслом 1:1 через день на протяжении одного месяца (91);

- пятикратное через 2 ч введение (внутримышечное) 50%-ного раствора тетрахлорметана в оливковом масле по 0,3 мл на 0,1 кг массы тела крысы (82).

Опыт-1 - 1-й месяц крысы находятся на общевиварном рационе первые 3 недели, далее - получение модели токсического гепатита (срок в зависимости от вида модели): 2 - 3-й месяц - на общевиварном рационе.

Опыт-2 - 1-й месяц крысы находится на общевиварном рационе с введением в него изучаемой БАД к пище первые три недели, далее - получение модели токсического гепатита (срок в зависимости от вида модели); 2 - 3-й месяц - на общевиварном рационе с введением в него изучаемой БАД к пище.

Контроль - 1-й, 2-й и 3-й месяцы крысы находятся на общевиварном рационе.

Забои животных проводятся: 1-й забой (забивают половину крыс из каждой группы, 6 - 8 животных) сразу после получения модели гепатита, 2-й - через 3 - 4 недели после первого забоя (вторая половина животных из каждой группы).

Экспериментальные исследования, рекомендуемые для оценки данного вида БАД: интегральные показатели, т. е. внешний вид животных, активность, масса тела, абсолютная и относительная масса внутренних органов.
Биохимические показатели
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Показатель |Метод |Литературный |

| | |источник |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Аланинаминотрансфераза |Спектрофотометрический | (92) |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Сорбитолдегидрогеназа |Спектрофотометрический | (93) |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Альдолаза |Спектрофотометрический | (94) |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Орнитинкарбомоилтрансфе- |Спектрофотометрический | (95) |

|раза | | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Холинэстераза |Спектрофотометрический | (96) |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Билирубин |Унифицированный метод по | (97) |

| |диазореакции в присутствии | |

| |акселератора | |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Щелочная фосфатаза |Спектрофотометрический | (98) |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Лактатдегидрогеназа |Спектрофотометрический | (99) |

|——————————————————————————|—————————————————————————————|——————————————|

|Белковые фракции |Электрофорез | (27) |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Морфологические методы: макро- и микроскопическое исследование печени.

Модели патологического состояния печени представлены также в следующих работах: острый тетрациклиновый гепатоз у крыс (83), хронический гепатит (8), цирроз печени (117), другие модели токсического гепатита (85 - 86).
Приложение N 4

к разделу "Парафармацевтики"
Оценка эффективности БАД к пище, рекомендуемых для

профилактики и в качестве вспомогательных средств при лечении

сердечно-сосудистых заболеваний
Модели гиперлипиемий.

1. Крысы - введение детергентов (тритон WR-1339 225 - 250 мг/кг массы тела внутрибрюшинно однократно). Через 8 - 10 ч после введения тритона WR-1339 наблюдается 6 - 8-кратное увеличение уровня триглицеридов в крови и 3 - 4-кратное увеличение содержания холестерина (126).

2. Крысы - применение диеты, содержащей 3 - 5% холестерина, 0,3% тиоурацила, 1% холевой кислоты. Дополнительно можно ввести витамин Д. Гиперлипидемия возникает через 3 - 4 недели. Длительное применение этой диеты с витамином Д (несколько месяцев) приводит к атеросклеротическому поражению аорты (126).

3. Морские свинки - применение диеты, содержащей 1,6% холестерина и 15% растительного масла. Через 6 - 10 дней развивается гиперлипидемия, усиливающаяся при более длительном применении диеты (126).

4. Кролики - применение диеты, содержащей 0,2 - 0,3 г/кг холестерина или введение холестерина зондом в подсолнечном масле в желудок в том же количестве (126).

При изучении БАД к пище, рекомендуемой в качестве вспомогательного или профилактического средства при лечении сердечно-сосудистых заболеваний, в эксперименте на животных можно рекомендовать следующие показатели для характеристики эффективности:

- интегральные показатели состояния животных - внешний вид, активность, масса тела, относительная масса внутренних органов;

- специальные показатели - артериальное давление, электрокардиографическое исследование.


Биохимические показатели
———————————————————————————————————————————————————————————————————————

|Показатели |Литературный источник |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Фибриноген | (114) |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Фибринолитическая активность | (114) |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Протромбиновый индекс и другие показатели | (114) |

|системы гемакоагуляции | |

|Холестерин | (103) |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Триглицериды | (104) |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Липопротеиды высокой плотности | (107, 108) |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Продукты ПОЛ (малоновый диальдегид, дие- | (110) |

|новые коньюгаты) | |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Показатели антиоксидантной защиты организ-|(35, 36, 42, 109, 111) |

|ма (глутатионредуктаза, глутатионперокси- | |

|даза, каталаза, супероксиддисмутаза, вита-| |

|мин А, Е, С, SH-группы, трансферрин) | |

|——————————————————————————————————————————|————————————————————————————|

|Аспартатаминотрансфераза (инфаркт миокар- | (92) |

|да) | |

———————————————————————————————————————————————————————————————————————

Макро- и микроскопические морфологические исследования сердца и, в случае необходимости, сосудов.
Приложение N 1

к разделу 13
Определение содержания эфедрина
2 - 3 г препарата, взвешенного с точностью до 0,01 г, обрабатывают однонормальным HCl 3 раза по 10 мл. Из объединенного экстракта удаляют липидные компоненты хлороформом 3 раза по 10 мл. Водный слой подщелачивают десятинормальным NaOH до рН 10 и хлороформом выделяют эфедрин. Хлороформовый экстракт упаривают на роторном испарителе, экстракт растворяют в 1 мл хлороформа и 1 мкл вводят в хроматограф.

Анализ проводят на хроматографе с пламенно-ионизационным детектором на полярной колонке при температуре 120° С. В этих же условиях анализируют стандартный раствор эфедрина (0,1 мг в 1 мл хлороформа). Содержание эфедрина выражают в мг на 100 г препарата и рассчитывают по формуле:


Сст. - Нпр.

Спр. = —————————————————— х 1000, где

Нст. х qпр.
Спр. - содержание эфедрина в препарате в мг на 100 г;

Сст. - концентрация эфедрина в стандартном растворе;

Нпр. - интегральный показатель пика эфедрина в препарате;

Нст. - интегральный показатель пика эфедрина в стандартном растворе;

qпр. - навеска препарата в г.

1   2   3   4   5   6   7   8


База данных защищена авторским правом ©bezogr.ru 2016
обратиться к администрации

    Главная страница