Использование стволовой клетки крови в медицине



Скачать 189.2 Kb.
Дата09.05.2016
Размер189.2 Kb.

САНКТ - ПЕТЕРБУРГСКАЯ ГОСУДАРСТВЕНАЯ ПЕДИАТРИЧЕСКАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ

Кафедра Гистологии и Эмбриологии
Реферат по Гистологии
Тема:
Использование стволовой клетки крови в медицине.

Выполнили: студенты 202 группы

Скрипченко Елена Фоменко Кирилл


САНКТ-ПЕТЕРБУРГ

2005 г
Содержание:

Список сокращений…………………………………………………………3



  1. Введение……………………………………………………………………..4

  2. Общая характеристика стволовых клеток крови………………………….5

  3. Локализация стволовых клеток крови……………………………………..5

  4. Основные свойства плюрипотентных стволовых клеток крови…………6

  5. Коммитирование, детерминация и дифференцировка стволовых клеток крови…………………………………………………………………………..7

  6. Классификация кроветворных клеток……………………………………….8

  7. Форменные элементы крови в тканях……………………………………….10

  8. Схема дифференцировки стволовой клетки………………………………..10

  9. Трансплантация гемопоэтических стволовых клеток пуповинной крови..11

  10. Способы сбора пуповинной крови…………………………………………..14

  11. Обработка пуповинной крови………………………………………………..14

  12. Замораживание пуповинной крови…………………………………………..15

  13. Применение стволовых клеток в медицине………………………………….16

  14. Заключение…………………………………………………………………….16

  15. Список литературы

Список сокращений.

ТКМ- трансплантация костного мозга

КМ- костный мозг

ГСК- гемопоэтические стволовые клетки

ПК- пуповинная кровь

РТПХ- реакция трансплантата против хозяина

ДМСО- диметилсульфоксид

ЯСК- ядросодержащие клетки

ЦМВ- вирус цитомегалии

HLA- лейкоцитарный антиген

ФСК- фактор стволовой клетки

СКК- стволовая клетка крови

КСФ- колониестимулирующие факторы

БОЕ- бурст-образующие единицы

КОЕ- колоние-образующие единицы


Введение.

Актуальность изучения стволовых клеток обусловлена их широким применением в медицине. Наиболее часто стволовые клетки используются в качестве трансплантатов при различных заболеваниях. Использование стволовых клеток крови, о существовании которых неспециалисты узнали недавно - это новое направление медицины, которое, тем не менее, развивается столь бурно, что в ближайшие несколько лет грозит перевернуть традиционные представления о возможностях лечения многих болезней: от инфаркта и инсульта до рака крови и переломов. Стволовые клетки не имеют специализации, то есть, способны при определенных условиях делиться и превращаться практически в любой вид взрослой ткани - в скелетные мышцы, нейроны, ткани печени и т.д. Открытие, грозящее революцией традиционной медицине, заключается в обнаружении общего принципа регенерации взрослых тканей. Оказывается, если в какой-то ткани возникает повреждение, то ее гибнущие клетки посылают в кровь химический сигнал, а костный мозг под влиянием этого сигнала выбрасывает в кровь стволовые элементы, которые, достигнув места повреждения, превращаются в нужный вид ткани.

К примеру, сразу же после инфаркта костный мозг начинает выбрасывать в кровь стволовые клетки, но их содержание в крови достигает максимума только на шестой день. Это поздно: в зоне повреждения уже формируется рубец. Эксперименты на мышах, проведенные американскими учеными, показали фантастические результаты введения дополнительных стволовых клеток: в ста процентах случаев на месте инфарктного рубца возникла живая ткань. Клинические технологии пока не отработаны, но ученые считают, что подобным образом стволовые клетки могут использоваться в онкологии, ортопедии, гематологии и др.

Источники стволовых клеток - это костный мозг взрослого человека, зародышевые ткани и кровь пуповины и плаценты.

Эмбриональная терапия тоже вызывает все больше споров во всем мире, и не только из-за морально-этической стороны дела, но и из-за чисто медицинской. В России любое клиническое использование эмбриональных клеток после длительных и ожесточенных споров было недавно запрещено решением Экспертного Совета Минздрава Российской Федерации. Со стволовыми клетками, полученными из крови пуповины и плаценты, подобных проблем - ни этических, ни медицинских - нет. В Америке и Европе банки стволовых клеток существуют уже несколько лет. Заключив договор с банком, родители могут заготовить "впрок" стволовые клетки для своего ребенка. Клетки хранятся в жидком азоте при низкой температуре и могут быть использованы для лечения самого ребенка, для родственных трансплантаций, а также в качестве донорского материала.


Общая характеристика стволовых клеток крови.

Плюрипотентные стволовые клетки крови по строению напо­минают малые лимфоциты, но могут быть идентифицированы иммуноцитохимически по набору антигенов на клеточной поверхности. Наибо­лее типичным маркерным признаком служит сочетание СD34+ СD38-.


Локализация СКК.

СКК сосредоточены у взрослого человека пре­имущественно в красном костном мозге, однако обнаруживаются в кро­ви, циркулируя в которой они попадают в другие органы кроветворения. Очевидно, что СКК обладают уникальной для малодифференцированных клеток способностью выселяться из костного мозга и, подобно зре­лым форменным элементам, мигрировать через эндотелий венозных си­нусов в кровь. В красном костном мозге их содержание невелико (одна СКК приходится примерно на 2000 клеток), в циркулирующей крови СКК составляют 0.0001% от общего числа лейкоцитов (что соответ­ствует соотношению 1 СКК : 1 млн. лейкоцитов). Важным источником получения СКК является плацентарная (пуповинная) кровь - концен­трация СКК в ней достигает 0.16% от числа лейкоцитов, т.е. в 2-3 раза превосходит таковую в красном костном мозге взрослого- По способ­ности к пролиферации СКК пуповинной крови в 10 раз превышают СКК костного мозга.


Основные свойства плюрипотентных стволовых клеток крови:

1. Обладают способностью к самоподдержанию без притока кле­ток извне (т.е. к образованию в результате деления дочерних клеток, не отличающихся своим практически неограниченным пролиферативным потенциалом от родительской). Согласно иным взглядам, они обладают высоким, но все же ограниченным пролиферативным потенциалом. В соответствии с такими представлениями, гемопоэз обеспечивается благодаря тому, что в течение жизни индивидуума происходит последо­вательная смена одних клонов стволовых клеток другими (теория клональной последовательности, или каскадная теория).

2. Редко делятся (основное состояние - покоя); однако могут быть вовлечены в пролиферацию при значительных кровопотерях и при воз­действии факторов роста. Деление СКК стимулируется факторах стволовых клеток (ФСК), который вырабатывается стромальными клет­ками костного мозга и фиксируется на поверхности стволовых клеток протоонкогенным белком с-kit.

Деление СКК может осуществляться в трех вариантах: (1) симмет­рично с образованием двух дочерних клеток, идентичных родительской (см. выше), (2) симметрично с появлением двух сходным образом коммитированных полустволовых клеток, (3) асимметрично путем так на­зываемого квантального митоза с образованием одной стволовой и одной коммитированной полустволовой клетки.

3. Способны образовывать все виды форменных элементов крови (т.е. обладают истинной плюрипотентностью).

4. Устойчивы к действию повреждающих факторов (по сравнению с более дифференцированными клетками).

5. Располагаются в местах, хорошо защищенных от внешних воз­действий (ячейки в костной ткани) и обладающих обильным кровоснаб­жением.

6. Циркулируют в крови, мигрируя в другие органы кроветворении.

Коммитирование, дифференцировка и детерминация стволовых клеток.

В ходе гемопоэза плюрипотентные СКК делятся и дают начало клеткам, пролиферация которых приводит ко все большему ограничению направлений их развития. Этот процесс обусловлен последовательным коммитированием (ограничением потенций развития) и детер­минацией (выбором направления развития) кроветворных клеток, которые на определенных этапах сопровождаются приобретением ими специфических структурных и функциональных признаков (дифференцировкой). Указанные процессы обусловлены внутренней программой развития гемопоэтических клеток, которая реализуется лишь в условии строго определенного для каждого типа клеток микроокружения - совокупности разнообразных физико-химических и трофических факто­ров, влияния гемопоэтинов (цитокинов. колониестимулирующих факто­ров - КСФ), контактных взаимодействий с другими гемопоэтическими и стромальными клетками, а также компонентами межклеточного вещества и другими.

Гемопоэтические факторы роста (гемопоэтины) вырабатыва­ются стромальными компонентами кроветворных тканей и органов, в первую очередь, ретикулярными клетками. Они продуцируются также эпителиальными клетками тимуса, макрофагами, Т-лимфоцитами, жировыми клетками, клетками эндотелия, а также клетками, расположенными вне кроветворных тканей (например, эритропоэтин вырабатывается клетками почек и печени). Они выделяются в кровь и могут действовать дистантно (подобно гормонам) или локально. Эффект гемопоэтинов проявляется в низких концентрациях, опосредован их связыванием со специфическими рецепторами на плазмолемме развивающихся клеток крови и заключается во влиянии на выживание, пролиферацию и дифференцировку этих клеток.

Каждый этап развития конкретной линии клеток требует присутст­вия определенной комбинации гемопоэтинов. Отдельный гемопоэтический фактор может оказывать влияние на один или несколько типов раз­вивающихся клеток.

Универсальным гемопоэтином служит ИЛ-3 (мульти-КСФ), кото­рый оказывает влияние как на самые ранние, так и на сравнительно поздние стадии гемопоэза. Основные эффекты ГМ-КСФ, Г-КСФ в М-КСФ связаны с их действием на родоначальные клетки, проявляющемся общей или раздельной стимуляций развития клеток линии гранулоцитов (нейтрофильных) и макрофагов. ИЛ-7 влияет на родоначальные клетки лимфоцитопоэза, стимулируя образование Т- и В-лимфоцитов.


Классифиация кроветворных клеток.

На основании способности к самообновлению, клеточному деле­нию и образованию форменных элементов различных типов кроветворные клетки можно разделить на шесть классов:

I класс - плюрипотентные стволовые клетки, которые могут

образовывать любые форменные элементы и обладают способностью к самообновлению (см. выше).


II класс - частично детерминированные поли-, или мулътипотентные родоначальные клетки, в англоязычной литературе, именуемые также полустволовыми клетками. Развива­ются из СКК, способны к ограниченному самоподдержанию, являются полипотентными, однако прошедшими первый этап коммитирования клетками, т.е. дающими начало форменным элементам нескольких (но не всех) видов. Родоначальные клетки, относящиеся к данному и следу­ющему (III) классам, называют также колониеобразующими единицами (КОЕ), поскольку в экспериментах на летально облученных мышах они способны давать колонии кроветворных клеток в их органах. Использу­емый иногда термин КОЕ-С (селезенки), применяется неоднозначно - одними авторами для обозначения клеток только I класса (СКК), а другими - также и полустволовых клеток (клеток II класса).

Частично детерминированные полипотентные родоначальные клетки включают родоначальную клетку лимфоцитопоээа (КОЕ-Л) и родоначальную клетку миелопоэза (КОЕ-ГЭММ), дающую начало гранулоцитам, эритроцитам. моноцитам и мегакариоцитам.

III класс - унипотентные (коммитированные) родоначальные

клетки, прошедшие новый этап коммитирования и детерминированные в направлении развития только одного вида форменных элементов (за исключением КОЕ-ГМ, дающей два вида - см. ниже). Они обладают

низким потенциалом самоподдержания. Эти клетки не идентифицируются морфологически и внешне сходны с малыми лимфоцитами.

Унипотентные (коммитированные) родоначальные клетки включают: (1) родоначальные клетки эритроцитов - БОЕ-Э - бурст-образуюющую единицу (происхождение термина см. ниже) и развивающуюся из нее КОЕ-Э, (2) КОЕ-Мег - родоначальную клетку мегакариоцитов, 3) КОЕ-ГМ - родоначальчую клетку гранулоцитов (нейтрофильных) и моноцитов, дающую КОЕ-Г(Н) - родоначальную клетку гранулоцитов (нейтрофильных) и КОЕ-Мо - родоначальную клетку моноцитов, (4) КОЕ-Баз - родоначальную клетку базофилов, (5) КОЕ-Эо - родоначальную клетку эозинофилов, (б) коммитированные клетки лимфоцитопоэза -про-В-лимфоциты и протимоциты.


IV класс - морфологически распознаваемые предшественнки в англоязычной литературе – бластные формы. Представляют отдельные линии развития форменных элементов. Пролиферативая активность этих клеток ограничена; способностью к самоподдержанию они не обладают. Название класса отражает тот факт, что, хотя морфологически все клетки этого класса сходны друг с другом, их можно идентифицировать при использовании стандартных гематологических методов окраски, не прибегая к выявлению иммуноцитохимических маркеров. Бластные формы имеют вид крупных клеток с базофильной цитоплазмой и светлым ядром, в котором хорошо определяются ядрышки.

V класс - созревающие (дифференцирующиеся) клетки. Подвергаются структурной и функциональной дифференцировке, образуя соответствующий вид форменных элементов, в ходе которой они (за исключением лимфоцитов и моноцитов) утрачивают способность к деле­нию.


VI класс - зрелые (дифференцированные) форменные элементы, циркулирующие в крови. Не способны к делению (за исключением лимфоцитов и моноцитов).

Форменные элементы крови в тканях.

Из зрелых форменных элементов лишь эритроциты и (частично) тромбоциты выполняют свои функции исключительно в кровотоке, лейкоциты же реализуют их пос­ле миграции в ткани. Часть клеток при этом подвергается дальнейшим образованиям (например, моноциты превращаются в макрофаги и дендритные АПК, лимфоциты под действием антигенной стимуляции подвергаются бласт-трансформации и дальнейшей дифференцировке, основная часть В-лимфоцитов дифференцируется в плазматические четки.
Схема дифференцировки плюрипотентной стволовой клетки.

Трансплантация гемопоэтических стволовых клеток пуповинной крови.

В настоящее время накоплен большой опыт лечения различных форм лейкозов, апластических анемий и ряда других тяжелых заболеваний системы крови с помощью трансплантации костного мозга (ТКМ). ТКМ позволяет во многих случаях добиться радикального излечения больных с такими заболеваниями. Однако осуществление пересадок костного мозга (КМ) связано со значительными трудностями в подборе подходящего донора.

Из-за большой полиморфности системы человеческого лейкоцитарного антигена (НLА) вероятность того, что неродственный донор костного мозга является НLА-совместимым, очень мала. В мире в целом записались в качестве доноров костного мозга более 2 млн добровольцев. Многие из них были типированы по НLА, благодаря чему создан огромный банк данных. Однако из-за исключительного нолнморфизма системы НLА лишь меньшинству пациентов, не имеющих идентичного по HLА родственного донора, можно осуществить трансплантацию костного мозга от неродственного донора. Однако, лишь часть доноров полностью типированы по НLА, а с донором не всегда можно связаться в нужный момент. Кроме того, необходимы различные иммунологические, вирусные и гемопоэтические проверки донорского костного мозга. Поэтому период между запросом и собственно трансплантацией иногда может составлять более 6 мес. Поиск подходящего донора костного мозга дорогой и длительный путь, и иногда пациент не доживает до трансплантации. Вероятность того, что для пациентов, принадлежащих к этническим меньшинствам, найдется НLА – идентичный, неродственный донор, может быть еще меньше, поскольку встречаемость определенных НLА в различных этнических группах варьирует.

Из сказанного ясно, насколько актуален поиск альтернативных источников гемопоэтических стволовых клеток для трансплантации, с тем, чтобы отпала необходимость брать костный мозг у добровольцев.

В последние годы широкое развитие получила идея трансплантации периферических гемопоэтических стволовых клеток (ГСК), извлеченных, в том числе, из пуповинной крови (ПК) человека. Многочисленные исследования показали, что ПК является богатым источником гемопоэтических стволовых клеток. Установлено также, что лимфоидные клетки пуповинной крови менее иммунореактивны, поэтому частичная несовместимость по антигенам НLА -системы при трансплантации гемопоэтических клеток допустима, а частота тяжелой реакции транспланта против хозяина (РТПХ) встречается реже, чем при ТКМ. При этом приживаемость трансплантата ПК не ниже, чем КМ, даже при использовании меньшего числа вводимых гемопоэтических клеток из расчета на 1кг массы тела больного.

Следует отметить, что использование ПК для пересадок имеет целый ряд преимуществ перед другими источниками кроветворных клеток:


  1. БЕЗОПАСНОСТЬ - Пуповинная кровь собирается легко и быстро. Сам по себе процесс сбора пуповинной крови прост, занимает менее 10 минут, не вызывает дискомфорта и безопасен и для матери, и для ребенка, т.к. при этом с ними нет контакта. Сбор же костного мозга занимает несколько часов и проводится под общим наркозом;

  2. КОЛИЧЕСТВО - Количество и концентрация стволовых клеток в пуповинной крови выше, чем в таких источниках, как костный мозг и периферическая кровь после мобилизации;

  3. МОЛОДОСТЬ - В течение всей жизни человек стареет и подвергается неблагоприятным воздействиям внешней среды и экологии, такие факторы как радиация, канцерогенные вещества воздействуют на весь организм и все его клетки. Стволовые клетки, полученные из пуповинной крови, намного моложе однотипных клеток из костного мозга, т.к. они сохранены в самом начале жизни и более защищены от этих воздействий;

  4. ПОТЕНЦИАЛ И АКТИВНОСТЬ - Ученые считают, что количество делений клеток ограничено. Стволовые клетки пуповинной крови собирают на одном из ранних этапов жизни человека, поэтому способность этих клеток делиться и превращаться в нужные организму клетки, а также их пролиферативная активность выше;

  5. ИММУНОТОЛЕРАНТНОСТЬ - Собственная кровь всегда на 100% подходит самому ребенку. С большой вероятностью она подойдет и его братьям, и сестрам. Обычно это вероятность 1/4. Но даже когда клетки пуповинной крови используют как донорские, они намного меньше вызывают осложнения и отторгаются, чем из костного мозга и периферической крови;

  6. ЭКОНОМИЧНОСТЬ - Найти подходящего донора костного мозга бывает сложно и дорого. Если же в банке хранится ваша пуповинная кровь, она доступна в любой момент. Кроме того, стоимость сбора, выделения и хранения клеток пуповинной крови значительно дешевле, чем стволовых клеток из костного мозга и периферической крови.

Конечно, у сбора пуповинной крови имеется и недостаток -

  1. ОДНОКРАТНОСТЬ - У каждого человека возможность собрать стволовые клетки пуповинной крови имеется только один раз в жизни - при рождении.

Процедура получения пуповинной крови состоит из нескольких этапов: сбора, обработки, замораживания и хранения.
Способы сбора пуповинной крови.

Учитывая малые объемы крови, которые можно собрать из плаценты (в среднем, не более 100 мл), на передний план выступает необходимость получения максимального количества крови из вены, а также снижения риска бактериальной контаминации образцов 11К.

Сбор ПК осуществляется после рождения ребенка и отделения его от последа, когда плацента еще

находится in utero или после ее рождения – ПРОБА ПУПОВИННОЙ КРОВИ

ex utero, а также при кесаревом сечении (ex utero). Bertolini F. и др. установили, что, если с момента рождения до отделения новорожденного от плаценты проходит не более 30 сек, то собираемый объем крови, в среднем, на 25-40 мл больше, чем при более позднем отделении ребенка. Ими также отмечено, что раннее отделение ребенка от последа не влечет за собой каких-либо отрицательных последствий для новорожденного. В настоящее время существует три метода сбора ПК:

1. при помощи эксфузии крови непосредственно в контейнер (закрытый способ);

2. путем активной эксфузии крови шприцами с дальнейшим промыванием вен плаценты и одновременным дренированием крови в контейнер (открытый способ);

3. посредством активного извлечения крови шприцами и промывания через артерию пуповины с одновременной эксфузией в контейнер (полуоткрытый способ).

Не зависимо от того, в каком городе России рожает женщина, есть возможность собрать кровь и доставить в лабораторию за 24 часа. Собранную кровь помещают в контейнер для транспортировки. В нем кровь защищена от ударов, вибрации, резких перепадов температуры и в полной сохранности вместе с сопроводительной документацией доставляется в хранилище.

Обработка пуповинной крови.

Перед помещением в хранилище пуповинная кровь ребенка должна быть обработана. Кровь взвешивают, подсчитывают количество стволовых клеток. Затем стволовые клетки выделяют из пуповинной крови и добавляют к ним криопротектор - раствор, который предохраняет клетки от разрушения при замораживании. Выделенные стволовые клетки помешают в мешки и криопробирки, разработанные специально для долгосрочного хранения при низких температурах. Каждому образцу присваивают уникальный идентификационный номер. Используемая маркировка гарантирует неприкосновенность стволовых клеток ребенка.

Стволовые клетки ребенка будут храниться в запаянном стерильном и герметичном мешке и в криопробирках в условиях глубокого холода. К каждому образцу прилагают пробирку-"спутник" с тем же идентификационным номером. Эта пробирка позволяет избежать нежелательного размораживания стволовых клеток, так как при необходимости дополнительных исследований (тестирования, типирования и т.д.) можно использовать именно ее содержимое.

Замораживание пуповинной крови.

Наиболее опасными для жизнеспособности клеток при их заготовке являются этапы замораживания и размораживания. При замораживании гемопоэтических клеток значительная их часть может разрушаться. В основном это имеет место во время перехода межклеточной среды из жидкой в твердую фазу (в момент кристаллизации). Для уменьшения процента гибели клеток используют специальные вещества - криопротектеры. Предполагаемые механизмы действия ограждающих растворов и их криозащитной эффективности достаточно подробно освещены в отечественной литературе. В последние годы установлено, что перспективным направлением разработки оптимальных методов криоконсервирования костного мозга и клеток пуповинной крови является сочетание в одном растворе нескольких ограждающих веществ различного механизма действия в низких концентрациях (например, интрацеллюлярного раствора диметилсульфоксида (ДМСО) и экстра целлюлярного раствора гидроксиэтилкрахмала, альбумина).

Образец с пробиркой-спутником помещают в специальный контейнер-криобокс, переносят в хранилище и подвергают плавному охлаждению до -80°С, после чего погружают в жидкий азот, в котором они и будут храниться. В каждой ячейке криобокса хранится один образец в мешке или криопробирках с пробиркой-спутником".

После этих этапов и получения результатов тестирования стволовые клетки закладываются на длительное хранение. Криохранилище представляет собой резервуар (дюар), объемом 500 литров, заполненный жидким азотом, внутри которого находится система для размещения криобоксов. Температура в дюаре -196°С. Сегодня имеется опыт хранения клеток в жидком азоте без потери активности до 20 лет, однако есть все основания предполагать, что они могут храниться гораздо дольше.

Применение стволовых клеток в медицине.

Первая в мире трансплантация ПК была выполнена более 10 лет назад ребенку с анемией Фанкони. С тех пор произведено уже более 750 таких пересадок больным с самыми различными заболеваниями опухолевой (лейкозы, лимфомы, солидные опухоли) и неопухолевой (врожденные иммунодефициты, анемии, болезни, связанные с нарушением обмена веществ) природы.

Следует отметить, что до настоящего времени нет единого мнения о количестве (дозе) гемопоэтических клеток, из расчета на 1 кг массы тела, необходимых для успешной трансплантации. Так, по данным Glukman Е. и др. успешные трансплантации с использованием клеток ПК были выполнены реципиентам, которым вводилось не менее 3,7 х107 ЯСК из расчета на 1 кг массы тела. Отмечалось также, что при применении доз менее 1х10 ЯСК на 1 кг массы тела значительно возрастал риск несостоятельности трансплантата и рецидива заболевания.

Клинический анализ эффективности пересадок кроветворных клеток ПК показал, что родственные трансплантации дают лучшие терапевтические результаты (годичная безрецидивная выживаемость составляла около 63%), чем неродственные (до 29%). Среди факторов, ассоциированных с большей выживаемостью при родственных и неродственных пересадках клеток ПК, называются небольшой возраст реципиентов (1-5 лет), ранняя диагностика заболевания, острый лейкоз с низким риском у детей. Большая выживаемость больных отмечалась также при использовании достаточных количеств ЯСК, инфузируемых на 1 кг массы тела, совместимости по антигенам НLА -системы и серонегативном анализе на ЦМВ у реципиентов. Rubinstein Р. и др. проанализировали 562 трансплантации с использованием клеток ПК, выполненных с августа 1992 г. по январь 1998 г. и отметили, что после инфузии гемопоэтических клеток ПК восстановление нейтрофилов у 81% больных было получено на 42-й день с момента трансплантации, а восстановление тромбоцитов - на 180-й день у 85% пациентов. Тяжелое течение острой РТПХ (III - IV стадии) встречалось у 23% реципиентов, а хронической РТПХ - у 25% реципиентов. Рецидивы острого лейкоза к концу первого года после пересадки клеток ПК отмечались у 26%.

Заключение

Таким образом, стволовые клетки крови могут широко применяться в медицине. Обобщая представленные в обзоре данные, необходимо констатировать, что пуповинная кровь может стать достойным альтернативным источником гемопоэтических клеток для трансплантации при многих тяжелых заболеваниях крови. Однако для успешного решения проблемы трансплантации с использованием клеток ПК необходимо разработать эффективные методы сбора, сепарации, криоконсервировапия клеток ПК. Учитывая возможность длительного хранения образцов пуповипной крови в жидком азоте, появляются условия для создания банков ПК, для которых потребуются относительно недорогие и эффективные способы тестирования и выделения ЯСК. При прогнозировании исходов пересадок гемопоэтических клеток ПК следует учитывать дозы ЯСК и их гсмопоэтичсский потенциал, наличие у реципиента положительной серологической реакции на ЦМВ, сроки диагностики и степень риска лейкоза, НLА- совместимость донора и реципиента, а также массу и возраст больного. Лишь в этом случае ПК может занять достойное место в трансплантологии наряду с КМ.


Список литературы:




  1. Абдулкадыров К.М., Романенко Н.А., Старков Н.Н.
    Получение и клиническое применение периферических гемопоэтических стволовых клеток из пуповинной крови // Вопросы онкологии.- 2000.

  2. Лаврик С.С. Консервирование костного мозга.- Киев.- 1975.- 127 С.

  3. Михайлов В.Г. Консервация костного мозга.- М., 1979.- 144 С.

  4. Пушкарь Н.С., Белоус А.М., Цуцаева А.А. и др. Низкотемпературное консервирование костного мозга.- Киев, 1977.- С.243.

  5. Федотенков А.Г., Шишкина И.Д. Данилова Л.Д. и др. Ограждающие растворы для криоконсервирования костного мозга// Гематол. и трансфузиол.- 1992. - №7-8.- С.12-15.

  6. Цуцаев А.А. Криоконсервирование клеточных суспензий.- Киев.- 1988.- 240 с.

  7. Чуйков В.А. Механизм криозащитной эффективности и фармакологические свойства диметилсульфоксида//Криобиология.- 1989.- №1.- С. 3-10.

  8. Bertolini F., Battaglia M. et al. Placental blood collection: Effects on Newborns// Blood.- 1995.- Vol.85.- P.3361-3362.

  9. Gluckman E., Broxmeyer H.E., Auerbach A.D. et al. Hematopoietic reconstitution in a patient with Fanconi anemia by means of umbilical-cord blood from an HLA-identical sibling// N. Engl. J. Med.- 1992.- Vol.321.- P.1174-1178.

  10. Gluckman E., Rocha V., Chastang C. Cord blood banking and transplant in Europ. Eurocord// Bone Marrow Transplant.- 1998.- Vol. 22.- Suppl. 1.- P. S68-74.

  11. Gluckman E., Rocha V., Chastang C. Cord blood banking and transplant in Europ. Eurocord// Vox Sang.- 1998.- Vol. 74.- Suppl. 2.- P. 95-101.

  12. Kogler G., Sarnowski A., Wernet P. Volume reduction of cord blood by Hetastarch for long-term cell banking// Bone Marrow Transplant.- 1998.- Vol. 22.- Suppl. 1.- P. S.14-15.

  13. Rubinstein P., Carrier C., Scaradavou A. et al. Outcome among 562 recipients of placental - blood transplants from unrelated donors// N. Engl. J. Med.- 1998.- Vol. 339.- N. 22.- P. 1565-1577.



База данных защищена авторским правом ©bezogr.ru 2016
обратиться к администрации

    Главная страница